Enzyme de restriction


Enzyme de restriction
L'enzyme de restriction EcoRV (en vert) avec son substrat : l'ADN [1]

Une enzyme de restriction est une protéine qui peut couper un fragment d'ADN au niveau d'une séquence de nucléotides caractéristique appelée site de restriction. Chaque enzyme de restriction reconnaît ainsi un site spécifique. Plusieurs centaines d'enzymes de restriction sont actuellement connues, on en retrouve naturellement dans un grand nombre d'espèces de bactéries.

Ces enzymes, naturellement présentes chez les bactéries, sont devenues des outils important en génie génétique.

Sommaire

Rôle biologique

Les enzymes de restriction sont produites par des bactéries et constituent un mécanisme de défense contre les infections par les bactériophages, des virus spécifiques des bactéries. Lorsque le virus injecte son ADN dans le micro-organisme, celui-ci est coupé par l'enzyme de restriction au niveau de ses sites spécifiques. La destruction du génome du virus bloque ainsi l'infection. Le nom d'enzyme de restriction provient de ce mécanisme, en effet la présence de ces enzymes dans les bactéries restreint l'infectiosité des bactériophages.

Pour éviter que l'enzyme de restriction ne coupe l'ADN de son propre génome, la bactérie fabrique aussi une deuxième enzyme appelée méthylase qui reconnaît également le site de restriction. La méthylase ne coupe pas l'ADN, mais le modifie en lui rajoutant un groupement méthyle sur un ou plusieurs nucléotides du site. Cette méthylation empêche la coupure par l'enzyme de restriction.

Ce mécanisme de défense, appelé système de restriction/modification, associe systématiquement ces deux enzymes, l'une de coupure et l'autre de protection.

Propriétés

Les enzymes de restrictions appartiennent à la classe des endonucléases, c'est-à-dire des enzymes capables de cliver les liaisons phosphodiester entre deux nucléotides à l'intérieur de la chaîne d'un acide nucléique, et plus spécifiquement appartiennent à la classe des endodésoxyribonucléases puisque spécifique à l'ADN. Les endonucléases diffèrent des exonucléases, puisqu'elles peuvent cliver les brins d'acide nucléique de manière interne, alors que les exonucléases n'attaquent la molécule d'acide nucléique qu'au niveau de ses extrémités.

Les enzymes de restriction sont capables de reconnaître spécifiquement et uniquement une courte séquence de l'ADN de 4 à 10 paires de bases, et de cliver les deux brins du duplex d'ADN au site reconnu. Cette propriété a depuis longtemps été utilisée en biologie moléculaire, puisqu'elles permettent de fragmenter l'ADN en segments de taille réduite en coupant à des sites définis.

Les enzymes de restriction peuvent être utilisées pour établir une carte génétique (appelée « carte de restriction ») d'une molécule d'ADN. La carte de restriction donne l'ordre des sites de restriction le long de cette molécule, et la taille des fragments produits. Cette technique de caractérisation des acides nucléiques, très utilisée voici une vingtaine d'années, est supplantée par le séquençage direct, devenu bien moins coûteux et réalisé de façon routinière.

Elles peuvent être également utilisées pour faire produire à des cellules hôte (par exemple la bactérie Escherichia coli ) une protéine exogène. Les enzymes de restriction jouent un rôle crucial dans ce processus car elles permettent, en coupant le brin à un endroit précis et de manière asymétrique, l'intégration d'un brin d'ADN spécifique codant pour une protéine précise dans un plasmide dans le but de l'exprimer dans une bactérie. Cette intégration peut être faite, profitant de l'asymétrie créée par l'enzyme de restriction, en jouant sur l'homologie de séquence au site de clivage == site d'intégration.

Selon la relation spatiale entre la séquence reconnue et le lieu de coupure, il est possible de distinguer trois types d'enzymes de restriction. Les enzymes de type I et de type III reconnaissent une séquence d'ADN spécifique et coupent en un endroit aléatoire, d'une distance d'environ 1 000 paires de bases (pb) pour le type I et de 25 pb pour le type III plus loin que le site de restriction. Ces 2 types ont également une activité méthylasique en plus de leur activité endonucléasique, ce qui les différencient du type II. Les enzymes de type II, les plus utilisées, reconnaissent une séquence spécifique et coupent en un endroit spécifique de cette séquence. Quelques exemples de ces enzymes figurent ci-dessous.

De manière générale, les enzymes de restriction sont bloquées par le monoazide d'éthidium.

Exemples d'enzymes de type II

Sur les autres projets Wikimedia :

Enzyme Source Sequence reconnue Coupure Extrémités (après coupure)
Eco RI Escherichia coli 5'GAATTC
3'CTTAAG
5'---G AATTC---3'
3'---CTTAA G---5'
Cohésives
BamHI Bacillus amyloliquefaciens 5'GGATCC
3'CCTAGG
5'---G GATCC---3'
3'---CCTAG G---5'
Cohésives
HindIII Haemophilus influenzae 5'AAGCTT
3'TTCGAA
5'---A AGCTT---3'
3'---TTCGA A---5'
Cohésives
MstII Microcoleus species 5'CCTNAGG
3'GGAMTCC
5'---CC TNAGG---3'
3'---GGAMT CC---5'
Cohésives
TaqI Thermus aquaticus 5'TCGA
3'AGCT
5'---T CGA---3'
3'---AGC T---5'
Cohésives
NotI Nocardia otitidis 5'GCGGCCGC
3'CGCCGGCG
HinfI Haemophilus influenzae 5'GANTC
3'CTNAG
AluI Arthrobacter luteus 5'AGCT
3'TCGA
5'---AG CT---3'
3'---TC GA---5'
Franches
BgIIII Bacillus globigi 5'AGATCT
3'TCTAGA
5'---A GATCT---3'
3'---TCTAG A---5'
Cohésives
HaeIII Haemophilus aegyptius 5'GGCC
3'CCGG
5'---GG CC---3'
3'---CC GG---5'
Franches
HhaI Haemophilus haemolyticus 5'GCGC
3'CGCG
5'---GCG C---3'
3'---C GCG---5'
Cohésives
PstI Providencia stuartii 5'CTGCAG
3'GACGTC
5'---CTGCA G---3'
3'---G ACGTC---5'
Cohésives
SmaI Serratia marcescens 5'CCCGGG
3'GGGCCC
5'---CCC GGG---3'
3'---GGG CCC---5'
Franches

Le N et le M dans la séquence de MstII peuvent être remplacés par une des 4 bases et son complément. La séquence de restriction du MstII est un exemple de palindrome imparfait puisqu'il comporte un nombre impair de paires de bases. Le nom de l'enzyme provient du nom de la bactérie qui les produit, parfois suivi d'une lettre selon la souche de laquelle elle dérive (le R de Eco RI) et le chiffre correspond à l'ordre dans lequel on les découvre.

Utilisation en génétique

Les digestions enzymatiques se font généralement dans un microtube mis au bain-marie à température convenablement réglé (généralement 37°C) sur un portoir flottant.

Notes et références

  1. Created from PDB 1RVA

Voir aussi

Liens externes


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